🧬 تمرین شماره ۳ دوره بیوانفورماتیک مقدماتی

از یک Variant تا طراحی Primer؛ یک مسیر واقعی طراحی پرایمر

در این تمرین قرار است مسیر طراحی پرایمر را از ابتدا تا انتها برای دو Variant واقعی طی کنید؛ از پیدا کردن Transcript و توالی مناسب و مشخص‌کردن محل جهش تا طراحی Primer، بررسی Dimer، اختصاصیت، SNPهای محل اتصال و ارزیابی نهایی محصول PCR.

دو مأموریت اصلی این تمرین
BTD
01
Transcript NM_001370658.1
Variant c.218A>G
TMEM38B
02
Transcript NM_018112.3
Variant c.270G>T
Variant ← Sequence ← Exon ← Primer Design ← Validation
🎯 هدف: طراحی Primer برای Variant واقعی
🧪 ابزارها: Ensembl، PerlPrimer، BLAST، SNPCheck و UCSC
📄 خروجی نهایی: فایل Word + Primer Pair منتخب
🎯 هدف آموزشی تمرین

در پایان این تمرین باید بتوانید مسیر طراحی Primer را مستقل انجام دهید

هدف این تمرین فقط ساختن یک Primer Pair نیست. قرار است یاد بگیرید چگونه با داشتن نام ژن، Transcript و HGVS از داده اولیه به یک طراحی قابل ارزیابی برسید.

01

پیدا کردن توالی مناسب

با استفاده از نام ژن و Transcript accession توالی مناسب را پیدا کنید و مطمئن شوید روی Transcript درست کار می‌کنید.

02

مشخص کردن جایگاه Variant

HGVS داده‌شده را تفسیر کنید، محل Variant را روی توالی پیدا کنید و نوکلئوتید موردنظر را در فایل Word به‌صورت واضح مشخص کنید.

03

تشخیص Exon مربوطه

مشخص کنید Variant در کدام Exon قرار دارد و ارتباط میان موقعیت cDNA، Transcript و ساختار Exon/Intron را در عمل بررسی کنید.

04

انتخاب محدوده هدف برای PCR

ناحیه‌ای مناسب در اطراف Variant انتخاب کنید تا محل تغییر داخل Amplicon قرار بگیرد و برای طراحی Primer قابل استفاده باشد.

05

طراحی Primer Pair

با استفاده از PerlPrimer Primerهای Forward و Reverse را طراحی کنید و ویژگی‌هایی مانند طول، Tm، GC% و اندازه محصول را بررسی کنید.

06

ارزیابی اختصاصیت و کیفیت Primer

Primer Pair منتخب را از نظر Dimer، اختصاصیت در NCBI BLAST، SNPهای محل اتصال و In-Silico PCR ارزیابی کنید.

مسیر مهارتی که در این تمرین طی می‌کنید

Gene ← Transcript ← HGVS ← Sequence ← Target Region ← Primer Design ← Validation
✓

خروجی مورد انتظار: دانشجو باید بتواند با داشتن نام ژن، Transcript و HGVS، مسیر طراحی Primer را از پیدا کردن توالی و جایگاه Variant تا انتخاب و ارزیابی Primer Pair به‌صورت مستقل طی کند.

مفاهیم پایه پیش از طراحی Primer

قبل از شروع چه چیزهایی باید بدانیم؟

پیش از آنکه سراغ نرم‌افزار طراحی Primer برویم، باید دقیقاً بدانیم روی چه نوع توالی کار می‌کنیم، شماره Variant به چه مرجعی اشاره دارد و Forward Primer، Reverse Primer و Amplicon چه ارتباطی با ناحیه هدف دارند.

یک نکته بسیار مهم درباره شماره‌گذاری Variant

وقتی عبارتی مانند c.218A>G می‌بینید، عدد 218 به شماره‌گذاری توالی کدکننده در Transcript مرجع مربوط است؛ یعنی نباید آن را به‌سادگی «باز شماره ۲۱۸ ژن روی کروموزوم» در نظر گرفت. موقعیت ژنومی Variant می‌تواند عددی کاملاً متفاوت داشته باشد و برای تفسیر صحیح HGVS باید همیشه Transcript مرجع را هم در نظر بگیرید.

DNA
Genomic Sequence

توالی ژنومی چیست؟

توالی ژنومی بخشی از DNA موجود روی کروموزوم است و می‌تواند شامل Exon، Intron و نواحی اطراف ژن باشد. وقتی قصد داریم Primer برای PCR روی DNA ژنومی طراحی کنیم، ساختار واقعی Exon و Intron اهمیت زیادی پیدا می‌کند.

نمایش ساده یک ناحیه ژنومی
EXON 1 INTRON EXON 2 INTRON EXON 3
cDNA
cDNA Sequence

توالی cDNA چه تفاوتی دارد؟

در cDNA، توالی حاصل از Transcript بالغ را دنبال می‌کنیم. بنابراین برخلاف توالی ژنومی، بخش‌های Intronic میان Exonها در Transcript بالغ وجود ندارند. به همین دلیل شماره‌گذاری یک Variant در cDNA با مختصات همان Variant روی ژنوم یکسان نیست.

نمایش ساده cDNA
EXON 1 EXON 2 EXON 3
TR
Transcript

چرا Transcript اهمیت دارد؟

یک ژن ممکن است چند Transcript مختلف داشته باشد. این Transcriptها می‌توانند در ترکیب Exonها و شماره‌گذاری موقعیت‌ها با هم تفاوت داشته باشند. بنابراین وقتی HGVS به‌صورت NM_...:c.... ارائه می‌شود، Accession و نسخه Transcript بخشی از تعریف دقیق Variant است.

Transcript 1
Transcript 2
EX
Exon / Intron

Exon و Intron را چرا مشخص می‌کنیم؟

برای طراحی Primer باید بدانیم Variant در کدام قسمت ژن قرار دارد و ناحیه اطراف آن چه ساختاری دارد. در این تمرین محل Variant را روی Exon مربوطه پیدا می‌کنید و سپس نواحی اطراف آن را برای انتخاب Target Region بررسی خواهید کرد.

نمونه مفهومی
INTRON EXON VARIANT EXON INTRON
F
Forward Primer

Forward Primer چیست؟

Forward Primer یکی از دو Primer واکنش PCR است و در یک سمت ناحیه‌ای قرار می‌گیرد که قرار است تکثیر شود. توالی آن همیشه باید با جهت 5′ → 3′ گزارش شود.

R
Reverse Primer

Reverse Primer چیست؟

Reverse Primer در سمت مقابل Forward Primer قرار می‌گیرد و به رشته مقابل DNA متصل می‌شود. در جدول نهایی سفارش Primer نیز توالی Reverse Primer مانند Forward Primer باید در جهت 5′ → 3′ نوشته شود.

PCR
Amplicon

Amplicon چیست؟

قطعه DNA که بین دو Primer قرار می‌گیرد و در PCR تکثیر می‌شود Amplicon نام دارد. Variant موردنظر باید در ناحیه‌ای مناسب از این محصول قرار گیرد تا بتوان آن را در مرحله بعد بررسی کرد.

Forward Primer
Reverse Primer
← محدوده Amplicon →
TG
Target Region

محدوده هدف چیست؟

پیش از طراحی Primer، بخشی از توالی اطراف Variant را به‌عنوان ناحیه هدف انتخاب می‌کنیم. Primerها باید در دو سمت این ناحیه قرار بگیرند و محصول PCR باید Variant موردنظر را در خود داشته باشد. در ادامه تمرین، همین محدوده را در فایل Word نیز مشخص خواهید کرد.

c.
HGVS c. notation

عبارت c.218A>G دقیقاً چه می‌گوید؟

پیشوند c. نشان می‌دهد Variant با استفاده از سیستم شماره‌گذاری DNA کدکننده توصیف شده است. در HGVS، شماره‌گذاری c.1 از نوکلئوتید A در کدون آغاز ATG شروع می‌شود. بنابراین برای تفسیر صحیح c.218A>G باید Transcript مرجع مشخص باشد.

c. 218 A>G
c. شماره‌گذاری بر اساس توالی کدکننده
218 موقعیت نوکلئوتید در شماره‌گذاری cDNA
A>G جایگزینی A با G در این موقعیت

تفاوتی که نباید در این تمرین فراموش کنید

Genomic Position

مختصات Variant روی کروموزوم است و براساس رفرنس ژنومی تعیین می‌شود. وجود Intronها و ساختار کامل ژن روی این مختصات اثر دارد.

cDNA Position

موقعیتی است که Variant براساس Transcript مرجع و سیستم شماره‌گذاری HGVS توصیف می‌شود. بنابراین c.218 به معنی موقعیت ژنومی 218 نیست.

قاعده این تمرین: قبل از پیدا کردن Variant یا طراحی Primer، ابتدا مطمئن شوید ژن، Transcript و نسخه Transcript را درست انتخاب کرده‌اید. یک اشتباه در همین مرحله می‌تواند تمام مراحل بعدی طراحی را روی توالی اشتباه پیش ببرد.
مثال آموزشی قبل از مأموریت اصلی

مسیر طراحی Primer را با یک Variant نمونه یاد بگیریم

قبل از اینکه سراغ BTD و TMEM38B بروید، یک مثال مستقل را مرحله‌به‌مرحله بررسی می‌کنیم. هدف این بخش ارائه Primer آماده نیست؛ هدف این است که منطق و ترتیب صحیح مراحل طراحی Primer را یاد بگیرید و سپس همین مسیر را برای مأموریت‌های اصلی خودتان تکرار کنید.

SAMPLE GENE HBB
مثال آموزشی این بخش

طراحی Primer در اطراف یک Variant در ژن HBB

فرض کنید اطلاعات اولیه زیر به شما داده شده است. از همین سه داده باید مسیر پیدا کردن توالی، تعیین جایگاه Variant، انتخاب ناحیه هدف و در نهایت ارزیابی Primerها را آغاز کنید.

Gene HBB
Reference Transcript NM_000518.5
HGVS c.20A>T
نکته: در این مثال عمداً توالی نهایی Primerها ارائه نمی‌شود. شما باید روش انتخاب Primer را یاد بگیرید؛ نه اینکه یک Primer Pair آماده را برای مأموریت اصلی کپی کنید.
STEP 01
Reference Transcript

اول Transcript مرجع را دقیق انتخاب کنید

کار را با نام ژن به‌تنهایی شروع نکنید. در این مثال Transcript مرجع NM_000518.5 است. هنگام دریافت توالی مطمئن شوید دقیقاً همین Accession و همین Version را بررسی می‌کنید؛ زیرا تفسیر HGVS به Transcript مرجع وابسته است.

Gene را کنترل کنید Accession را کنترل کنید Version را فراموش نکنید
STEP 02
HGVS Interpretation

HGVS را بخوانید و محل Variant را پیدا کنید

عبارت c.20A>T می‌گوید در موقعیت شماره 20 از سیستم شماره‌گذاری coding DNA، نوکلئوتید A با T جایگزین شده است. این عدد را نباید با موقعیت ژنومی روی کروموزوم یکی بدانید.

نمایش مفهومی محل Variant باید مشخص شود
... FLANK A > T FLANK ...
STEP 03
Exon / Intron

مشخص کنید Variant در کدام بخش Transcript قرار دارد

اکنون باید ساختار Transcript را بررسی کنید و محل Variant را نسبت به Exon و Intron مشخص کنید. هدف این مرحله آن است که بتوانید جایگاه Variant را از شماره‌گذاری cDNA به ساختار واقعی ژن ارتباط دهید.

Exon مربوطه را پیدا کنید مرز Exon/Intron را ببینید Variant را در Word Highlight کنید
STEP 04
Genomic Sequence

توالی مناسب برای طراحی PCR را آماده کنید

حالا که محل Variant را می‌دانید، باید ناحیه ژنومی مناسب اطراف آن را استخراج کنید. توالی باید به‌اندازه‌ای از دو طرف Variant ادامه داشته باشد که نرم‌افزار بتواند گزینه‌های مناسب برای Forward و Reverse Primer پیدا کند.

5′ FLANK TARGET REGION VARIANT TARGET REGION 3′ FLANK
STEP 05
Target Region

ناحیه‌ای را مشخص کنید که باید در PCR تکثیر شود

Variant باید داخل محصول PCR قرار بگیرد و Primerها در دو سمت ناحیه هدف قرار بگیرند. محدوده‌ای را که برای طراحی انتخاب کرده‌اید در فایل Word نیز مشخص کنید تا بعداً بتوانید محل Primerها و Amplicon را روی همان توالی نشان دهید.

STEP 06
PerlPrimer

Primer Pairهای پیشنهادی را طراحی و مقایسه کنید

توالی انتخاب‌شده را وارد PerlPrimer کنید و Primer Pairهای پیشنهادی را بررسی کنید. برای هر Pair باید مشخصات Primer Forward و Reverse و ویژگی‌هایی مانند Length، Tm، GC% و Product Size را ثبت کنید.

Forward Primer Reverse Primer Tm GC% Product Size
STEP 07
Dimer Check

قبل از ادامه، Primer-Dimer را بررسی کنید

اولین Primer Pair نرم‌افزار الزاماً بهترین انتخاب نیست. Primerهای منتخب را از نظر تشکیل ساختارهای نامطلوب و Dimer بررسی کنید و فقط Pairهای مناسب را برای مرحله بعد نگه دارید.

Forward / Forward Reverse / Reverse Forward / Reverse
STEP 08
NCBI BLAST

اختصاصیت Primerها را بررسی کنید

توالی Primerهای منتخب را در BLAST بررسی کنید. سؤال اصلی این است که آیا Primer فقط ناحیه موردنظر را هدف می‌گیرد یا اتصال‌های غیراختصاصی مهمی نیز مشاهده می‌شود؟

اختصاصیت مناسب
↓
ادامه بررسی
یا
اتصال غیراختصاصی نامناسب
↓
بازگشت و انتخاب Primer دیگر
STEP 09
SNPCheck

محل اتصال Primer را از نظر SNP بررسی کنید

Primerهایی که مراحل قبل را پشت سر گذاشته‌اند باید از نظر وجود Variant یا Polymorphism در محل اتصال نیز بررسی شوند. در این تمرین به‌خصوص پنج نوکلئوتید انتهای 3′ Primer را با دقت بررسی می‌کنیم.

STEP 10
UCSC In-Silico PCR

محصول PCR را به‌صورت In-Silico بررسی کنید

در مرحله نهایی Forward و Reverse Primer را در In-Silico PCR بررسی کنید. خروجی باید به شما کمک کند محل اتصال Primerها و محصول مورد انتظار را روی توالی ببینید و نتیجه را با طراحی خودتان تطبیق دهید.

مسیر کامل ارزیابی
PerlPrimer ← Dimer ← BLAST ← SNPCheck ← UCSC

در فایل Word چه چیزهایی باید مشخص شوند؟

فایل Word فقط محل نوشتن جواب نیست؛ مستند مسیر طراحی شماست.

Gene و Reference Transcript
توالی مورد استفاده برای طراحی
محل دقیق Variant روی توالی
Exon مربوط به Variant
Target Region انتخاب‌شده
محل Forward و Reverse Primer
مشخصات Primer Pair منتخب
نتیجه Dimer، BLAST، SNPCheck و In-Silico PCR

حالا نوبت شماست

در مثال HBB مسیر کار را دیدید. در مأموریت اصلی دیگر راه‌حل مرحله‌به‌مرحله در اختیار شما نیست و باید همین فرآیند را به‌صورت مستقل برای دو Variant زیر انجام دهید.

BTD | NM_001370658.1 | c.218A>G TMEM38B | NM_018112.3 | c.270G>T
مأموریت اصلی تمرین شماره ۳

حالا مسیر طراحی Primer را خودتان اجرا کنید

در بخش آموزشی با منطق و ترتیب مراحل آشنا شدید. اکنون باید همان Workflow را به‌صورت مستقل برای دو Variant تعیین‌شده انجام دهید و نتیجه هر مرحله را در فایل Word تمرین مستند کنید.

نکته مهم: برای هر مأموریت دقیقاً از Transcript و Version نوشته‌شده در کارت همان ژن استفاده کنید. پاسخ نهایی فقط توالی Primer نیست؛ مسیر پیدا کردن توالی، Variant، Target Region و ارزیابی Primer نیز بخشی از تمرین است.
MISSION A

BTD

مأموریت اول
آماده انجام

اطلاعات اولیه مأموریت

Gene BTD
Transcript NM_001370658.1
HGVS c.218A>G

مأموریت شما

محل Variant را با استفاده از Transcript مشخص‌شده پیدا کنید، ناحیه مناسب اطراف آن را برای PCR انتخاب کنید، Primer Pair طراحی کنید و Primerهای منتخب را مرحله‌به‌مرحله ارزیابی نمایید.

مراحل مورد انتظار

  • دریافت و ثبت توالی مناسب ژن در فایل Word
  • پیدا کردن و Highlight کردن Variant
  • مشخص کردن Exon مربوطه و نواحی اطراف
  • انتخاب Target Region مناسب برای PCR
  • طراحی Forward و Reverse Primer
  • بررسی Primer-Dimer
  • بررسی اختصاصیت Primer با NCBI BLAST
  • بررسی محل اتصال Primer با SNPCheck
  • بررسی محصول نهایی با UCSC In-Silico PCR
خروجی مأموریت A Primer Pair منتخب، مشخصات کامل Primerها، Target Region و نتایج مراحل ارزیابی باید در فایل Word نهایی ثبت شوند.
MISSION B

TMEM38B

مأموریت دوم
آماده انجام

اطلاعات اولیه مأموریت

Gene TMEM38B
Transcript NM_018112.3
HGVS c.270G>T

مأموریت شما

با استفاده از Transcript تعیین‌شده، محل Variant را پیدا کنید و سپس از انتخاب Target Region تا طراحی و اعتبارسنجی Primer Pair، تمام مراحل تمرین را به‌صورت مستقل انجام دهید.

مراحل مورد انتظار

  • دریافت و ثبت توالی مناسب ژن در فایل Word
  • پیدا کردن و Highlight کردن Variant
  • مشخص کردن Exon مربوطه و نواحی اطراف
  • انتخاب Target Region مناسب برای PCR
  • طراحی Forward و Reverse Primer
  • بررسی Primer-Dimer
  • بررسی اختصاصیت Primer با NCBI BLAST
  • بررسی محل اتصال Primer با SNPCheck
  • بررسی محصول نهایی با UCSC In-Silico PCR
خروجی مأموریت B Primer Pair منتخب، مشخصات کامل Primerها، Target Region و نتایج مراحل ارزیابی باید در فایل Word نهایی ثبت شوند.

این مسیر باید برای هر دو مأموریت به‌طور کامل طی شود

Transcript ← Sequence ← Variant ← Exon ← Target Region ← PerlPrimer ← Dimer ← BLAST ← SNPCheck ← UCSC
هدف این تمرین پیدا کردن «اولین Primer پیشنهادی نرم‌افزار» نیست. باید Primer Pair انتخاب‌شده را در مراحل بعدی ارزیابی کنید و اگر از نظر Dimer، اختصاصیت یا محل اتصال مناسب نبود، به مرحله طراحی برگردید و گزینه مناسب‌تری انتخاب کنید.
مستندسازی مراحل تمرین

فایل Word ژن را مرحله‌به‌مرحله بسازید

فایل Word شما فقط یک پاسخ متنی نیست؛ باید نقشه کامل مسیر طراحی Primer را نشان دهد. توالی موردنیاز را وارد فایل کنید و سپس Exonها، Intronها، محل Variant و محدوده‌ای را که برای طراحی Primer انتخاب کرده‌اید، به‌صورت واضح مشخص نمایید.

از یک فایل خالی شروع کنید

برای هر ژن، اطلاعات Gene، Transcript و HGVS را در ابتدای فایل ثبت کنید. سپس توالی موردنیاز را از منبع معتبر دریافت کرده و در Word قرار دهید. در ادامه همین توالی باید به‌صورت تصویری و رنگی Annotate شود تا مشخص باشد Variant در چه ناحیه‌ای قرار دارد و چه محدوده‌ای برای طراحی Primer انتخاب شده است.

WORD CHECKLIST

در فایل هر ژن چه چیزهایی باید مشخص شوند؟

  • 01 توالی موردنیاز توالی مورد استفاده برای طراحی را در فایل Word قرار دهید.
  • 02 Exonها نواحی Exonic موجود در توالی را به‌صورت واضح از سایر بخش‌ها متمایز کنید.
  • 03 Intronها نواحی Intronic اطراف Exon موردنظر نیز باید قابل تشخیص باشند.
  • 04 محل Variant موقعیت Variant را روی توالی پیدا و دقیقاً مشخص کنید.
  • 05 نوکلئوتید Variant نوکلئوتید مربوط به Variant را با Highlight مشخص کنید تا در توالی قابل مشاهده باشد.
  • 06 Target Region محدوده‌ای از توالی را که برای طراحی Primer انتخاب کرده‌اید مشخص کنید.
  • 07 محل Primerها پس از انتخاب Primer Pair نهایی، جای Forward و Reverse Primer را نیز روی همان توالی مشخص خواهید کرد.

نمونه شماتیک از ظاهر فایل Word

EXAMPLE ONLY
GENE GENE-X
TRANSCRIPT NM_XXXXXX.X
HGVS c.XXXA>G
Exon Intron Variant Target Region Primer
نمایش آموزشی توالی – اعداد و توالی واقعی نیستند
INTRON ... F-PRIMER TARGET EXON VARIANT EXON TARGET R-PRIMER ... INTRON
Target Region
Variant
Primer Pair
01 دریافت توالی
02 انتقال به Word
03 مشخص کردن Exon / Intron
04 Highlight کردن Variant
05 تعیین Target Region

پیشنهاد برای یکسان بودن فایل‌های ارسالی

آبی روشن برای Exon
بنفش روشن برای Intron
زرد برای Variant
سبز روشن برای Target Region
مهم: رنگ‌های بالا برای منظم و قابل‌بررسی شدن فایل‌ها پیشنهاد شده‌اند. مهم‌تر از رنگ، این است که دانشجو بتواند به‌طور شفاف نشان دهد کدام قسمت Exon، کدام قسمت Intron، محل Variant کجاست و چه محدوده‌ای برای طراحی Primer انتخاب شده است.
فایل Word باید روند تصمیم‌گیری شما را قابل مشاهده کند مدرس باید با باز کردن فایل بتواند ببیند از چه توالی استفاده کرده‌اید، Variant را کجا پیدا کرده‌اید، چه ناحیه‌ای را برای طراحی انتخاب کرده‌اید و در ادامه Primerهای نهایی در کجای همان توالی قرار گرفته‌اند.
مرحله بعد: پیدا کردن محل جهش

جایگاه Variant را روی Transcript پیدا کنید

بعد از انتخاب Transcript صحیح، باید HGVS را تفسیر کنید، مشخص کنید Variant در کدام Exon قرار گرفته و سپس همان موقعیت را در توالی مورد استفاده خود پیدا و در فایل Word مشخص کنید.

شماره‌گذاری cDNA را با مختصات Genomic اشتباه نکنید

اگر Variant به‌صورت c.218A>G نوشته شده باشد، عدد 218 در سیستم شماره‌گذاری coding DNA برای همان Transcript مرجع تعریف شده است. این عدد به این معنی نیست که Variant در باز شماره 218 کروموزوم یا حتی باز شماره 218 از کل توالی ژنومی ژن قرار دارد.

01

Transcript را دوباره کنترل کنید

قبل از تفسیر موقعیت Variant مطمئن شوید دقیقاً از همان Transcript accession و Version تعیین‌شده در مأموریت استفاده می‌کنید.

02

عبارت HGVS را تجزیه کنید

در c.218A>G ابتدا نوع شماره‌گذاری، سپس موقعیت و در نهایت تغییر نوکلئوتیدی را مشخص کنید.

03

Exon مربوط به Variant را پیدا کنید

ساختار Transcript را بررسی کنید و مشخص نمایید موقعیت موردنظر در کدام Exon قرار گرفته است. شماره Exon باید توسط خود شما استخراج شود.

04

موقعیت را روی توالی خودتان پیدا کنید

حالا همان محل را در توالی‌ای که برای فایل Word آماده کرده‌اید پیدا کنید و مطمئن شوید Reference nucleotide با HGVS داده‌شده مطابقت دارد.

05

نوکلئوتید Variant را Highlight کنید

نوکلئوتید مربوط به Variant را در فایل Word با Highlight مشخص کنید تا محل آن نسبت به Exon، Intron و ناحیه هدف کاملاً قابل مشاهده باشد.

VISUAL GUIDE

از HGVS تا محل واقعی Variant

نمودار زیر فقط برای آموزش مفهوم است و شماره Exon مأموریت واقعی را نشان نمی‌دهد.

c. 218 A>G
c. coding DNA numbering
218 position
A>G nucleotide change
نمایش شماتیک Transcript
EXON EXON FIND THIS EXON EXON ? EXON
سپس همان باز را در توالی پیدا کنید توالی زیر ساختگی است
G T C A C A G C T G A
همین نوکلئوتید را در Word مشخص کنید Highlight باید به‌گونه‌ای باشد که مدرس بتواند محل Variant را بلافاصله در میان توالی تشخیص دهد.

این دو نوع موقعیت را با یکدیگر یکی نگیرید

cDNA / HGVS Position

موقعیت نسبت به Transcript مرجع و سیستم شماره‌گذاری coding DNA تعریف می‌شود؛ مانند c.218.

Genomic Coordinate

مختصات واقعی Variant روی کروموزوم و Assembly ژنومی است و معمولاً عدد کاملاً متفاوتی دارد.

خروجی این مرحله برای هر مأموریت

  • Transcript صحیح را تأیید کنید.
  • Exon حاوی Variant را مشخص کنید.
  • محل Variant را روی توالی خودتان پیدا کنید.
  • Reference nucleotide را با HGVS تطبیق دهید.
  • نوکلئوتید Variant را در فایل Word Highlight کنید.
مرحله انتخاب ناحیه برای طراحی Primer

Target Region مناسب را در اطراف Variant انتخاب کنید

حالا که محل Variant را پیدا کرده‌اید، باید ناحیه‌ای از توالی اطراف آن را برای طراحی Primer انتخاب کنید. هدف این است که Variant داخل Amplicon نهایی قرار بگیرد و در دو سمت آن نیز توالی کافی برای انتخاب Primerهای مناسب وجود داشته باشد.

Target Region فقط خود Variant نیست

برای طراحی Primer نمی‌توان تنها نوکلئوتید تغییرکرده را به نرم‌افزار داد. باید بخشی از توالی در دو طرف Variant را نیز در اختیار داشته باشیم تا بتوان Forward و Reverse Primer مناسب را در اطراف ناحیه موردنظر انتخاب کرد.

01

از محل Variant شروع کنید

ابتدا همان نوکلئوتیدی را که در مرحله قبل پیدا و Highlight کرده‌اید به‌عنوان نقطه مرجع در نظر بگیرید.

02

توالی دو طرف Variant را بررسی کنید

ناحیه‌های قبل و بعد از Variant همان Flanking Sequence هستند و برای پیدا کردن محل‌های مناسب اتصال Primer اهمیت دارند.

03

یک محدوده مناسب انتخاب کنید

محدوده‌ای از توالی را انتخاب کنید که Variant درون آن قرار داشته باشد و در دو سمت آن فضای مناسبی برای طراحی Primer وجود داشته باشد.

04

ساختار Exon و Intron را فراموش نکنید

هنگام کار روی DNA ژنومی، Target Region ممکن است شامل بخش‌هایی از Exon و Flanking Intronic Sequence باشد. بنابراین ساختار ژن را همزمان با توالی بررسی کنید.

05

Target Region را در Word مشخص کنید

محدوده انتخاب‌شده را با Highlight یا رنگ مشخص از سایر بخش‌های توالی جدا کنید تا در ادامه محل Primerها روی همان توالی ثبت شود.

VISUAL GUIDE

Variant باید داخل محدوده‌ای قابل تکثیر قرار بگیرد

شکل زیر صرفاً شماتیک است و اندازه واقعی Target Region یا Amplicon مأموریت‌های BTD و TMEM38B را نشان نمی‌دهد.

نمایش شماتیک ناحیه مورد بررسی EXAMPLE ONLY
VARIANT Flanking Sequence Target Region Flanking Sequence
Variant ← Flanking Sequence ← Target Region ← Primer Design
در مرحله بعد Primerها باید دو سمت ناحیه هدف را پوشش دهند
Forward Primer Reverse Primer ← Amplicon →

هنگام انتخاب Target Region این چهار سؤال را از خودتان بپرسید

01 Variant داخل محدوده است؟ محصول نهایی PCR باید ناحیه موردنظر را در خود داشته باشد.
02 دو طرف توالی کافی داریم؟ نرم‌افزار برای انتخاب Forward و Reverse Primer به Flanking Sequence نیاز دارد.
03 ساختار ژن مشخص است؟ جای Exon، Intron و Variant را روی توالی بررسی کنید.
04 محدوده را مستند کرده‌اید؟ Target Region انتخاب‌شده باید در فایل Word کاملاً مشخص باشد.

این سه لایه را در فایل Word از هم متمایز کنید

دانشجو باید بتواند با نگاه به توالی نشان دهد خود Variant کجاست، چه محدوده‌ای را برای طراحی Primer انتخاب کرده و توالی‌های اطراف آن در کجا قرار دارند.

Variant ← Target Region ← Flanking Sequence
خروجی این مرحله: برای هر دو مأموریت BTD و TMEM38B، Target Region مناسب را در اطراف Variant انتخاب کنید و همان ناحیه را در فایل Word به‌صورت واضح مشخص نمایید. هنوز قرار نیست Primer نهایی را انتخاب کنید؛ مرحله بعد، وارد کردن این ناحیه در PerlPrimer و بررسی Primer Pairهای پیشنهادی است.
مرحله طراحی Primer

طراحی Primer در PerlPrimer

Target Region آماده‌شده را وارد PerlPrimer کنید و Primer Pairهای پیشنهادی را براساس معیارهایی که در دوره آموزش داده شده‌اند بررسی نمایید. در این مرحله باید فقط Primer تولید نکنید؛ بلکه مشخصات هر Primer Pair را مقایسه و انتخاب خود را مستند کنید.

تنظیمات عددی این تمرین باید مطابق آموزش مدرس باشد

مقادیر دقیق Primer Length، Tm، GC% و Amplicon Size در این صفحه عمداً تعیین نشده‌اند. این مقادیر باید دقیقاً مطابق معیارهایی باشند که مدرس در دوره آموزش داده است و نباید یک عدد عمومی یا فرضی را به‌عنوان معیار رسمی تمرین جایگزین کرد.

Target Region ← PerlPrimer ← Primer Pairs ← Compare ← Candidate Pair
01

توالی Target Region را وارد کنید

همان توالی‌ای را که در مرحله قبل برای طراحی انتخاب و در فایل Word مشخص کرده‌اید، وارد PerlPrimer کنید. قبل از ادامه مطمئن شوید توالی مربوط به ژن و Transcript صحیح است.

02

محدوده Primer Length را تنظیم کنید

طول Primerها را براساس محدوده‌ای که مدرس در دوره مشخص کرده است تنظیم کنید. این معیار باید برای Forward و Reverse Primer هنگام مقایسه گزینه‌ها در نظر گرفته شود.

03

Melting Temperature را بررسی کنید

Tm هر دو Primer را بررسی کنید و تنها Pairهایی را نگه دارید که با معیار تعیین‌شده مدرس سازگار باشند. علاوه بر مقدار هر Primer، ارتباط Tm دو Primer یک Pair نیز باید بررسی شود.

04

GC% را کنترل کنید

درصد GC هر Primer را در خروجی بررسی کنید و آن را با محدوده موردنظر مدرس تطبیق دهید. نتیجه این بررسی را نیز برای Primer Pair منتخب در فایل Word ثبت کنید.

05

Amplicon Size را تنظیم کنید

محدوده اندازه محصول PCR را براساس معیار آموزشی دوره مشخص کنید و مطمئن شوید Variant داخل Amplicon حاصل از Primer Pair قرار می‌گیرد.

06

Primer Pairهای پیشنهادی را مقایسه کنید

تنها اولین Pair پیشنهادشده را انتخاب نکنید. چند گزینه مناسب را از نظر Sequence، Length، Tm، GC% و Product Size با یکدیگر مقایسه کنید.

PRIMER DESIGN PARAMETERS

چه اطلاعاتی را باید هنگام طراحی کنترل کنید؟

برای هر Primer Pair پیشنهادی، این پارامترها را بررسی کنید. کادرهای زرد عمداً فاقد عدد هستند تا معیار رسمی مدرس بعداً در آن‌ها قرار گیرد.

Primer Length bp

طول Forward و Reverse Primer را بررسی کنید.

محدوده قابل قبول طبق معیار مدرس
Melting Temperature Tm

Tm هر Primer و تناسب آن در Primer Pair را بررسی کنید.

محدوده قابل قبول طبق معیار مدرس
GC% %

درصد GC هر Primer را از خروجی ثبت کنید.

محدوده قابل قبول طبق معیار مدرس
Amplicon Size PCR

اندازه محصول مورد انتظار PCR را بررسی کنید.

محدوده قابل قبول طبق معیار مدرس

نمونه ساختار اطلاعات یک Primer Pair

Forward Primer 5′ → 3′
YOUR-FORWARD-PRIMER-SEQUENCE
Reverse Primer 5′ → 3′
YOUR-REVERSE-PRIMER-SEQUENCE
Length ثبت شود
Tm ثبت شود
GC% ثبت شود
Product ثبت شود

آیا اولین Primer Pair را انتخاب می‌کنیم؟

پارامترها مناسب‌اند
↓
نگه داشتن به‌عنوان Candidate
یا
یک یا چند معیار مناسب نیست
↓
بررسی Primer Pair دیگر

از Primer Pair منتخب چه اطلاعاتی را در Word ثبت کنیم؟

Forward Primer Sequence
Reverse Primer Sequence
Primer Length
Forward Tm
Reverse Tm
GC%
Amplicon Size
محل Primerها روی توالی
شماره یا مشخصات Pair منتخب
Primerهای منتخب را روی توالی Word هم مشخص کنید وقتی یک Primer Pair را به‌عنوان Candidate انتخاب کردید، محل Forward و Reverse Primer را روی همان توالی‌ای که قبلاً Variant و Target Region را در آن مشخص کرده بودید Highlight کنید. به این ترتیب فایل Word مسیر کامل طراحی شما را نشان خواهد داد.
هنوز Primer نهایی نشده است. انتخاب یک Primer Pair مناسب در PerlPrimer فقط آغاز مرحله ارزیابی است. در مرحله بعد باید Primerهای Candidate را از نظر Primer-Dimer بررسی کنید و Pair نامناسب را کنار بگذارید.
مرحله ارزیابی Primer Pair

بررسی Primer-Dimer در PerlPrimer

Primer Pair پیشنهادی هنوز Primer نهایی نیست. قبل از رفتن به مرحله بررسی اختصاصیت باید احتمال تشکیل Dimer را بین Primerها بررسی کنید و فقط Pair مناسب را برای مراحل بعد نگه دارید.

هر Primer Pair باید از سه جهت بررسی شود

فقط بررسی Forward و Reverse در کنار هم کافی نیست. برای هر Candidate Pair باید Forward–Forward، Reverse–Reverse و Forward–Reverse را بررسی کنید و نتیجه هر سه حالت را در تصمیم نهایی در نظر بگیرید.

F-F

Forward – Forward

Forward Self-Dimer

بررسی کنید آیا دو مولکول Forward Primer می‌توانند با یکدیگر Complementarity قابل توجه ایجاد کنند یا خیر.

F
⋮ ⋮ ⋮
F
R-R

Reverse – Reverse

Reverse Self-Dimer

همین بررسی را برای Reverse Primer انجام دهید و احتمال اتصال دو Reverse Primer به یکدیگر را ارزیابی کنید.

R
⋮ ⋮ ⋮
R
F-R

Forward – Reverse

Hetero-Dimer

در مرحله سوم بررسی کنید Forward و Reverse Primer تا چه اندازه می‌توانند با یکدیگر Complementarity ایجاد کنند.

F
⋮ ⋮ ⋮
R

مسیر بررسی هر Primer Pair

Candidate Pair ← Forward–Forward ← Reverse–Reverse ← Forward–Reverse ← Keep / Reject

هنگام مشاهده نتیجه Dimer به چه چیزهایی توجه کنیم؟

میزان Complementarity میان Primerها را بررسی کنید.
به اتصال‌هایی که در نزدیکی انتهای 3′ رخ می‌دهند توجه ویژه داشته باشید.
نتیجه هر سه حالت F–F، R–R و F–R را قبل از انتخاب Pair بعدی کنار هم ببینید.

بعد از بررسی Dimer چه تصمیمی می‌گیریم؟

Dimer نامطلوب مشاهده نمی‌شود
↓
Primer Pair را برای مرحله بعد نگه دارید
یا
Dimer نامناسب مشاهده می‌شود
↓
Pair را کنار بگذارید و گزینه دیگری بررسی کنید
نتیجه بررسی Dimer را در فایل Word ثبت کنید برای Primer Pair منتخب مشخص کنید که Forward–Forward، Reverse–Reverse و Forward–Reverse بررسی شده‌اند. اگر Pairی به دلیل Dimer کنار گذاشته شد، می‌توانید علت رد آن را نیز کوتاه ثبت کنید تا مسیر انتخاب Primer قابل پیگیری باشد.
عبور از Dimer Check هنوز به معنی تأیید نهایی Primer نیست. Primer Pairی که این مرحله را پشت سر گذاشت، در مرحله بعد باید از نظر اختصاصیت بررسی شود. بنابراین قدم بعدی، بررسی توالی Primerها در NCBI BLAST است.
مرحله بررسی اختصاصیت Primer

بررسی اختصاصیت Primer با NCBI BLAST

Primer Pairی که مرحله Dimer Check را پشت سر گذاشته است، هنوز باید از نظر اختصاصیت اتصال بررسی شود. در این مرحله توالی Primerها را ارزیابی می‌کنید تا مشخص شود آیا عمدتاً ناحیه موردنظر را هدف می‌گیرند یا احتمال اتصال‌های غیراختصاصی مهم نیز وجود دارد.

سؤال اصلی این مرحله

آیا Primerها ناحیه موردنظر را به‌صورت مناسب هدف می‌گیرند؟

هدف این است که قبل از رفتن به مراحل بعد، اتصال‌های احتمالی Primerها به نواحی دیگر را بررسی کنید و در صورت مشاهده مشکل مهم، همان Primer Pair را کنار بگذارید.

01

Primer Pair عبورکرده از Dimer Check را بردارید

فقط Primer Pairهایی را وارد این مرحله کنید که بررسی Forward–Forward، Reverse–Reverse و Forward–Reverse را پشت سر گذاشته‌اند.

02

توالی Primerها را آماده کنید

توالی دقیق Forward و Reverse Primer منتخب را از PerlPrimer بردارید و از درست بودن جهت و Sequence ثبت‌شده اطمینان حاصل کنید.

03

Primerها را در NCBI بررسی کنید

توالی Primer را براساس روش آموزش‌داده‌شده توسط مدرس در محیط NCBI بررسی کنید و Hitها و محل‌های احتمالی اتصال را ارزیابی نمایید.

04

نتایج غیراختصاصی را بررسی کنید

وجود Match با نواحی دیگر را بررسی کنید و مشخص نمایید آیا نتیجه می‌تواند از نظر اختصاصیت Primer مشکل‌ساز باشد یا خیر.

05

برای Primer Pair تصمیم بگیرید

اگر نتیجه مناسب بود، Pair را برای مرحله بعد نگه دارید. اگر اختصاصیت مناسب نبود، به PerlPrimer برگردید و Pair دیگری انتخاب کنید.

VISUAL GUIDE

Primer منتخب را در برابر توالی‌های دیگر ارزیابی کنید

نمایش زیر فقط برای توضیح مفهوم Hit و اتصال احتمالی است و خروجی واقعی BLAST هیچ‌یک از مأموریت‌های تمرین نیست.

Forward Primer 5′ → 3′
YOUR-FORWARD-PRIMER
Reverse Primer 5′ → 3′
YOUR-REVERSE-PRIMER
نتیجه مناسب Hit مورد انتظار با الگوی قابل قبول مشاهده می‌شود و اتصال غیراختصاصی مهمی طبق معیار آموزشی تمرین دیده نمی‌شود.
نیازمند بررسی Hitهای دیگری مشاهده می‌شوند که ممکن است انتخاب Primer را زیر سؤال ببرند و باید قبل از ادامه ارزیابی شوند.

هنگام بررسی نتیجه، این سؤال‌ها را از خودتان بپرسید

01 Target اصلی دیده می‌شود؟ آیا نتیجه مورد انتظار مربوط به ژن و ناحیه‌ای است که برای آن Primer طراحی کرده‌اید؟
02 Hit دیگری وجود دارد؟ Matchهای دیگر را نادیده نگیرید و اهمیت آن‌ها را براساس روش آموزش‌داده‌شده بررسی کنید.
03 Pair قابل ادامه است؟ در پایان باید بتوانید تصمیم بگیرید این Primer Pair به مرحله بعد برود یا کنار گذاشته شود.

طراحی Primer یک مسیر خطی نیست؛ یک چرخه انتخاب و ارزیابی است

Design PerlPrimer
←
Dimer Check F–F / R–R / F–R
←
BLAST Specificity
←
Pass? تصمیم‌گیری
YES Primer Pair مناسب است Pair را نگه دارید و برای مرحله بعدی ارزیابی آماده کنید.
NO اختصاصیت مناسب نیست این Pair را کنار بگذارید و به مرحله طراحی Primer بازگردید.
BLAST Failed ← Back to PerlPrimer ← Select New Primer Pair ← Dimer Check Again
نتیجه بررسی اختصاصیت را در فایل Word ثبت کنید برای Primer Pair منتخب مشخص کنید که بررسی اختصاصیت انجام شده است و نتیجه کلی آن چه بوده است. اگر یک Pair به دلیل نتیجه نامناسب کنار گذاشته شد، علت رد آن را نیز کوتاه ثبت کنید. این کار نشان می‌دهد انتخاب Primer نهایی حاصل یک فرآیند ارزیابی بوده است، نه صرفاً اولین پیشنهاد نرم‌افزار.
عبور از BLAST نیز پایان ارزیابی نیست. Primer Pairی که از نظر Dimer و اختصاصیت مناسب بوده است، در مرحله بعد باید از نظر وجود SNP و Polymorphism در محل اتصال Primer بررسی شود؛ به‌خصوص ناحیه حساس انتهای 3′ Primer.
مراحل پایانی ارزیابی Primer

از SNPCheck تا In-Silico PCR

Primer Pairی که از بررسی Dimer و اختصاصیت عبور کرده است، حالا باید از نظر Variantهای محل اتصال Primer بررسی شود و سپس محصول PCR آن به‌صورت In-Silico ارزیابی گردد.

STEP 12
SNPCheck

محل اتصال Primer را از نظر SNP بررسی کنید

Forward و Reverse Primer منتخب را از نظر وجود SNP یا Polymorphism در محل اتصال بررسی کنید. مطابق دستور مدرس، توجه ویژه‌ای به پنج نوکلئوتید انتهای 3′ Primer داشته باشید.

01

Primer Pair تأییدشده را بردارید

فقط Primerهایی را وارد این مرحله کنید که قبلاً از Dimer Check و بررسی اختصاصیت عبور کرده‌اند.

02

Forward Primer را بررسی کنید

محل اتصال Forward Primer را از نظر وجود SNPها و Variantهای شناخته‌شده بررسی و نتیجه را ثبت کنید.

03

Reverse Primer را بررسی کنید

همین بررسی باید به‌صورت مستقل برای محل اتصال Reverse Primer نیز انجام شود.

04

پنج نوکلئوتید انتهای 3′ را جداگانه ببینید

در این تمرین باید پنج باز انتهایی سمت 3′ Primer با حساسیت بیشتری بررسی شوند.

05

درباره Primer تصمیم بگیرید

نتیجه را براساس معیار آموزش‌داده‌شده توسط مدرس ارزیابی کنید و مشخص کنید Primer قابل ادامه است یا باید گزینه دیگری انتخاب شود.

3′ END CHECK

چرا انتهای 3′ را جداگانه بررسی می‌کنیم؟

محل Variant نسبت به کل Primer اهمیت دارد. طبق روش این تمرین، وجود SNP در پنج باز انتهایی سمت 3′ باید با دقت بیشتری بررسی شود؛ زیرا این ناحیه در عملکرد Primer اهمیت زیادی دارد.

Forward Primer 5′ → 3′
A T G C A C G T C A G
← پنج نوکلئوتید انتهایی 3′
Reverse Primer 5′ → 3′
G C T A G T A C G T C
← پنج نوکلئوتید انتهایی 3′
نکته: مشاهده یک SNP را به‌تنهایی مساوی رد قطعی Primer در نظر نگیرید. موقعیت SNP و معیارهایی که مدرس آموزش داده است باید در تصمیم نهایی لحاظ شود؛ اما پنج نوکلئوتید انتهایی 3′ در این تمرین حساسیت بیشتری دارند.
Primer قابل ادامه است طبق معیار تمرین، SNP مشکل‌سازی در محل اتصال مشاهده نشده است؛ Primer Pair را برای بررسی نهایی نگه دارید.
Primer نیازمند تغییر است اگر نتیجه طبق معیار مدرس قابل قبول نبود، Pair را کنار بگذارید و به گزینه بعدی برگردید.
STEP 13
UCSC In-Silico PCR

محصول PCR نهایی را به‌صورت In-Silico بررسی کنید

Forward و Reverse Primer تأییدشده را در ابزار In-Silico PCR وارد کنید و بررسی نمایید آیا محصول مورد انتظار با طراحی شما سازگار است یا خیر.

01 Amplicon را بررسی کنید محصول PCR پیش‌بینی‌شده را با Amplicon مورد انتظار خود مقایسه کنید.
02 محل Forward و Reverse را ببینید بررسی کنید Primerها در کدام موقعیت‌ها به توالی هدف متصل شده‌اند.
03 محصول احتمالی را ارزیابی کنید بررسی کنید نتیجه In-Silico با محصولی که برای Variant هدف طراحی کرده‌اید سازگار باشد.
04 خروجی را با Word تطبیق دهید محل Primerها و Amplicon را روی توالی فایل Word خودتان نیز مشخص کنید.

نمایش شماتیک نتیجه مورد انتظار

EXAMPLE ONLY
Forward Primer Reverse Primer Amplicon Variant

قبل از تأیید Primer Pair این چهار مورد را کنترل کنید

Forward Primer در محل مورد انتظار قرار گرفته باشد.
Reverse Primer در محل مورد انتظار قرار گرفته باشد.
Variant داخل Amplicon پیش‌بینی‌شده قرار داشته باشد.
نتیجه In-Silico PCR با طراحی مورد انتظار سازگار باشد.
حالا فایل Word را کامل کنید بعد از بررسی In-Silico PCR، محل Forward Primer، Reverse Primer، Variant و محدوده Amplicon نهایی را روی توالی فایل Word مشخص کنید. در پایان باید بتوان با نگاه به فایل، محل قرارگیری Primer Pair نسبت به Variant را به‌وضوح مشاهده کرد.

حالا چرخه ارزیابی Primer شما کامل شده است

PerlPrimer ← Dimer Check ← BLAST ← SNPCheck ← UCSC In-Silico PCR ← Final Primer Pair
جمع‌بندی طراحی Primer

جدول نهایی Primerهای منتخب

بعد از اینکه Primer Pairهای شما مراحل طراحی، Dimer Check، BLAST، SNPCheck و In-Silico PCR را پشت سر گذاشتند، اطلاعات نهایی هر Primer را به‌صورت منظم در جدول پایانی فایل Word ثبت کنید.

این جدول باید در انتهای فایل Word قرار گیرد

برای هر ژن، Forward و Reverse Primer را در دو ردیف جداگانه ثبت کنید. Sequenceها باید در جهت 5′ → 3′ نوشته شوند و مشخصات عددی نیز دقیقاً از Primer Pair نهایی استخراج شوند.

FINAL PRIMER TABLE

جدول استاندارد گزارش Primerها

خانه‌های «...» باید توسط دانشجو با اطلاعات Primer Pair نهایی تکمیل شوند.

Word Final Table
Gene Primer Sequence 5′→3′ Length Tm GC% Product Size
BTD Forward ... ... ... ... ...
BTD Reverse ... ... ... ... ...
TMEM38B Forward ... ... ... ... ...
TMEM38B Reverse ... ... ... ... ...

نتیجه اعتبارسنجی Primer Pair نهایی

در کنار جدول Primerها، نتیجه چهار مرحله اصلی ارزیابی را نیز ثبت کنید تا مشخص باشد Primer Pair نهایی از چه بررسی‌هایی عبور کرده است.

Dimer Check 01

نتیجه بررسی F–F، R–R و F–R برای Primer Pair نهایی.

Result ثبت شود
BLAST 02

نتیجه بررسی اختصاصیت Primer و Hitهای احتمالی.

Result ثبت شود
SNPCheck 03

نتیجه بررسی SNPها، مخصوصاً پنج نوکلئوتید انتهای 3′.

Result ثبت شود
In-Silico PCR 04

نتیجه بررسی محصول PCR و موقعیت Primerها در UCSC.

Result ثبت شود

بخش توالی و Annotate فایل Word

  • توالی ژن و ناحیه مورد استفاده
  • Exon و Intron
  • محل Variant
  • Target Region
  • محل Forward و Reverse Primer
  • محدوده Amplicon

بخش نتیجه نهایی فایل Word

  • جدول Forward و Reverse Primer
  • Sequence در جهت 5′→3′
  • Length، Tm و GC%
  • Product Size
  • نتیجه Dimer و BLAST
  • نتیجه SNPCheck و In-Silico PCR
فقط Primer Pair نهایی را در جدول اصلی وارد کنید ممکن است در طول تمرین چند Primer Pair را بررسی کرده و بعضی از آن‌ها را به دلیل Dimer، اختصاصیت یا SNP کنار گذاشته باشید. جدول اصلی پایین فایل Word باید شامل Primer Pair منتخب نهایی باشد؛ در صورت نیاز، علت رد گزینه‌های قبلی را در بخش توضیحات یا مراحل بررسی ثبت کنید.
بخش تحلیل و استدلال

سؤالات تحلیلی تمرین

طراحی Primer فقط وارد کردن توالی در چند نرم‌افزار نیست. در این بخش باید نشان دهید چرا یک Primer را انتخاب یا رد کرده‌اید و منطق علمی مراحل طراحی و ارزیابی را درک کرده‌اید.

پاسخ‌ها را با استدلال خودتان بنویسید

هدف این سؤالات پیدا کردن یک جمله آماده نیست. هنگام پاسخ دادن از اتفاقاتی که در طراحی Primerهای BTD و TMEM38B دیده‌اید استفاده کنید و توضیح دهید هر معیار چگونه می‌تواند بر انتخاب Primer Pair اثر بگذارد.

01
موقعیت Variant Amplicon Design

چرا در این طراحی بهتر است Variant در موقعیت مناسبی داخل Amplicon قرار بگیرد و بیش از حد به انتهای محصول موردنظر نزدیک نباشد؟

درباره هدف آزمایش، محل Variant و امکان بررسی مناسب ناحیه موردنظر فکر کنید.
در فایل Word: پاسخ خود را همراه با دلیل بنویسید.
02
ویژگی Primer Pair Melting Temperature

چرا دو Primer با Tm بسیار متفاوت معمولاً انتخاب مناسبی برای یک Primer Pair نیستند؟

Forward و Reverse Primer قرار است در یک واکنش PCR و تحت شرایط حرارتی مشترک عمل کنند.
در فایل Word: ارتباط Tm دو Primer با عملکرد Pair را توضیح دهید.
03
ترکیب توالی GC Content

چرا GC% یکی از پارامترهایی است که هنگام انتخاب Primer بررسی می‌شود؟

درباره ترکیب نوکلئوتیدی Primer و ویژگی‌های اتصال آن به توالی مکمل فکر کنید.
در فایل Word: اهمیت GC% را با استدلال توضیح دهید.
04
تعامل Primerها Primer-Dimer

چرا بررسی Dimer فقط برای Forward و Reverse Primer به‌صورت جداگانه کافی نیست؟

سه بررسی Forward–Forward، Reverse–Reverse و Forward–Reverse را دوباره مرور کنید.
در فایل Word: توضیح دهید چرا تعامل بین دو Primer نیز باید بررسی شود.
05
اختصاصیت PerlPrimer → BLAST

چرا بعد از طراحی Primer در PerlPrimer هنوز لازم است Primerهای منتخب را از نظر اختصاصیت بررسی کنیم؟

مناسب بودن پارامترهای طراحی الزاماً به معنی اختصاصی بودن محل اتصال Primer نیست.
در فایل Word: تفاوت «طراحی مناسب» و «اختصاصیت مناسب» را توضیح دهید.
06
محل اتصال Primer 3′ End / SNP

چرا هنگام بررسی SNPها، وجود Variant در انتهای 3′ Primer اهمیت بیشتری پیدا می‌کند؟

مطابق آموزش تمرین، به پنج نوکلئوتید انتهایی 3′ و نقش این ناحیه در عملکرد Primer توجه کنید.
در فایل Word: دلیل حساسیت بیشتر ناحیه 3′ را توضیح دهید.
07
تصمیم‌گیری Dimer PASS / BLAST FAIL

اگر یک Primer Pair از نظر Dimer مناسب باشد اما در بررسی اختصاصیت نتیجه قابل قبول نداشته باشد، چه تصمیمی می‌گیرید و مرحله بعد چیست؟

چرخه Design → Dimer Check → BLAST → Pass? را دوباره در نظر بگیرید.
در فایل Word: مسیر تصمیم‌گیری و دلیل آن را مرحله‌به‌مرحله بیان کنید.
08
جهت توالی Reverse Primer

چرا Reverse Primer را هنگام مقایسه با توالی مرجع به شکل متفاوتی مشاهده می‌کنیم؟

به دو رشته DNA، جهت 5′→3′ و مفهوم Complementary / Reverse Complement فکر کنید.
در فایل Word: جهت Reverse Primer را با توالی مرجع توضیح دهید.

در پاسخ‌ها فقط «درست یا غلط» ننویسید

مشاهده چه چیزی در نتیجه دیدید؟
←
تفسیر این نتیجه چه معنایی دارد؟
←
تصمیم Primer را نگه می‌دارید یا رد می‌کنید؟
←
دلیل چرا این تصمیم را گرفتید؟
پاسخ هر ۸ سؤال باید در فایل Word تمرین نوشته شود برای هر سؤال شماره آن را درج کنید و پاسخ را با جملات خودتان بنویسید. در صورت امکان پاسخ را به Primerهایی که خودتان برای BTD و TMEM38B بررسی کرده‌اید مرتبط کنید. هدف، نشان دادن منطق علمی پشت انتخاب‌ها و تصمیم‌های شماست.
هدف این قسمت استفاده از نرم‌افزار نیست؛ فهمیدن تصمیم پشت نرم‌افزار است. ممکن است دو دانشجو در یک مرحله گزینه‌های متفاوتی ببینند، اما آنچه اهمیت دارد این است که بتوانند توضیح دهند چرا یک Primer Pair را انتخاب کرده‌اند، چرا گزینه دیگری را کنار گذاشته‌اند و هر مرحله از ارزیابی چه اطلاعاتی به تصمیم آن‌ها اضافه کرده است.
✓ تحویل تمرین شماره ۳

تمرین را تکمیل و ارسال کنید

بعد از تکمیل طراحی Primer برای BTD و TMEM38B، فایل Word نهایی را آماده کنید، آن را از طریق فرم ارسال تمرین بارگذاری کنید و سپس ارسال پاسخ را در بخش دیدگاه‌ها اعلام نمایید.

01 دانلود Word دریافت قالب تمرین
02 تکمیل پاسخ تکمیل تمام مراحل تمرین
03 ارسال DOCX بارگذاری در فرم زیر
04 ثبت دیدگاه اعلام ارسال پاسخ
W

۱. قالب Word تمرین را دریافت کنید

Exercise 03 Answer Template

تمام مراحل انجام تمرین باید در یک فایل Word نهایی مستند شوند.

توالی BTD و TMEM38B و اطلاعات Transcript
Exon، Intron و محل Variant
Target Region و محل Primerها
جدول نهایی Forward و Reverse Primer
نتایج Dimer، BLAST، SNPCheck و In-Silico PCR
پاسخ سؤالات تحلیلی
↑

۲. فایل تکمیل‌شده را ارسال کنید

DOCX Submission

بعد از تکمیل فایل، آن را ذخیره کنید و از طریق فرم واقعی ارسال تمرین که دقیقاً در پایین همین بخش قرار دارد بارگذاری نمایید.

هر دو مأموریت باید داخل یک فایل نهایی باشند.
فایل را قبل از ارسال یک بار کامل بررسی کنید.
جدول Primerهای نهایی باید تکمیل شده باشد.
پس از آپلود موفق، به مرحله ثبت دیدگاه بروید.
فرمت مجاز: DOCX   |   حداکثر حجم: 5 MB
↓ فرم ارسال فایل دقیقاً در بخش بعدی قرار دارد ابتدا فایل DOCX را از طریق فرم زیر ارسال کنید. بعد از مشاهده پیام ارسال موفق، به بخش ثبت دیدگاه بروید.

ارسال پاسخ تمرین

پاسخ خود را در فایل Word با فرمت DOCX آماده کنید و از فرم زیر ارسال نمایید. حداکثر حجم فایل ۵ مگابایت است.

دوره: بیوانفورماتیک مقدماتی

بعد از ارسال فایل: برای اینکه مشارکت شما در صفحه تمرین ثبت شود، در قسمت دیدگاه‌ها بنویسید:
پاسخ تمرین ارسال شد.
نام و نام خانوادگی: [نام کامل شما]
آخرین مرحله تحویل

بعد از ارسال فایل، یک دیدگاه ثبت کنید

فقط بعد از اینکه فایل DOCX با موفقیت در فرم بالا ارسال شد، به بخش دیدگاه‌های همین صفحه بروید و ارسال پاسخ خود را اعلام کنید.

ارسال موفق DOCX ← ثبت دیدگاه ← بررسی توسط مدرس
متن پیشنهادی دیدگاه
پاسخ تمرین ارسال شد. نام و نام خانوادگی: ...
دیدگاه جایگزین فایل پاسخ نیست. ابتدا فایل DOCX را از طریق فرم ارسال تمرین بارگذاری کنید و تنها پس از ارسال موفق، این دیدگاه را ثبت نمایید.
مسیر تمرین‌ها

بازگشت به تمرین قبلی

اگر هنوز تمرین شماره ۲ را تکمیل نکرده‌اید یا می‌خواهید مفاهیم Gene، Transcript و ساختار ژن را دوباره مرور کنید، از این بخش به تمرین قبلی برگردید.

EXERCISE 02
تمرین قبلی

بررسی ساختار ژن در Ensembl؛ BRCA1، TP53 و CFTR

بررسی Gene، Transcript، Canonical Transcript، Exon، Intron و ساختار ژن در Ensembl.

→ رفتن به تمرین شماره ۲
تمرین شماره ۳ در حال حاضر آخرین تمرین منتشرشده این مسیر است.